Praktyka
Gęste media
Agar z siarczynem bizmutu
______________________________________________
Paratyfus Salmonelloza
Przygotowane podłoże jest nieprzezroczyste i ma kolor groszkowozielony. Ściśle selektywne podłoże do izolacji czystych kultur Salmonelli. Salmonella typhi, Salmonella enteritidis I Salmonella typhimurium zwykle tworzą się na tym podłożu czarne kolonie z metalicznym połyskiem, otoczone strefą czernienia w wyniku wytwarzania siarkowodoru i redukcji siarczynu do siarczynu żelaza, który ma czarny kolor. Salmonella paratyphi A tworzy jasnozielone kolonie.
Przykładowa odpowiedź: Na podłożu stałym „agar z siarczynem bizmutu” znaleziono małe kolonie. Gładka o równej krawędzi, ciemna i kryjąca z metalicznym połyskiem.
______________________________________________
środa Levin
Przykładowa odpowiedź: Na podłożu Levina stwierdzono małe, gładkie kolonie o gładkich krawędziach, o barwie niebieskofioletowej z metalicznym połyskiem, z fermentacją laktozy do kwasu. Wskaźnikiem jest błękit metylenowy. Wstępna diagnoza - zapalenie jelita grubego wywołane przez Escherichia coli - Escherichia coli.
Przykładowa odpowiedź: Podłoże to jest podłożem Levina, opracowanym w celu uzyskania izolowanych kolonii. Na pożywce stwierdzono małe, gładkie, przezroczyste, bezbarwne kolonie i nie stwierdzono fermentacji laktozy. Wstępna diagnoza – czerwonka spowodowana możliwymi patogenami:
Serogrupa A: Shigella czerwonka(10 serotypów)
Serogrupa B: S. flexneri(6 serotypów i podtypów)
Serogrupa C: S. boydii(15 serotypów)
Serogrupa D: S. sonnei(1 serotyp)
______________________________________________
Endo średnie
______________________________________________
Przykładowa odpowiedź: To podłoże to podłoże Endo. Znaleziono na nim małe, bezbarwne, przezroczyste, gładkie kolonie o gładkiej krawędzi. Nie ma rozkładu laktozy do kwasu, na co wskazuje kolor podłoża. Stosowany jest wskaźnik Andrade. Przypuszczalna diagnoza to dur brzuszny wywołany przez Salmonella Typhi.
Przykładowa odpowiedź: Podłoże to służy do akumulacji izolowanych kolonii. Środa – Endo. Stwierdzono, że jest mały, gładki o gładkiej krawędzi, czerwony z metalicznym połyskiem w wyniku rozkładu laktozy do kwasu za pomocą wskaźnika Andrade. Wstępna diagnoza - zapalenie jelita grubego wywołane przez Escherichia coli - Escherichia coli.
______________________________________________
Metody określania wrażliwości na antybiotyki
______________________________________________
Przykładowa odpowiedź: Szalka Petriego wprowadza metodę oznaczania wrażliwości na antybiotyki – metodę krążków papierowych, w której na powierzchnię agaru na szalce Petriego nakłada się zawiesinę bakteryjną, a następnie umieszcza się krążki zawierające określoną ilość antybiotyku. Dyfuzja antybiotyku do agaru prowadzi do powstania strefy tłumienia wzrostu mikroorganizmów wokół krążków. Po inkubacji szalek w termostacie w temperaturze 35–37 o C przez noc, wynik uwzględnia się, mierząc średnicę strefy wokół krążka w milimetrach.
Wyizolowana kultura jest bardzo wrażliwa na monomycynę, średnica powodująca opóźnienie wzrostu wynosi 30 mm, neomycyna – 26 mm, kanamycyna – 20 i nie zawiera chloramfenikolu. Charakterystyka E. coli - Escherichia coli.
______________________________________________
Siew z powietrza
______________________________________________
Przykładowa odpowiedź: Ten agar płytkowy zaszczepiano powietrzem metodą sedymentacji. Wskaźnikiem zanieczyszczenia powietrza w pomieszczeniach jest całkowita liczba bakterii na 1 metr sześcienny. Liczbę bakterii określa się w ciągu 10 minut. W tym celu szalkę Petriego z płytką MPA pozostawia się otwartą na powietrzu przez 10 minut, a następnie inkubuje w termostacie w temperaturze 37 stopni przez 24 godziny. Wyniki oblicza się na podstawie całkowitej liczby kolonii. Normą na sali operacyjnej przed operacją jest 3-5 kolonii. Po – 15. Istnieje również metoda aspiracji, w której powietrze ocenia się za pomocą specjalnego urządzenia Krotovy.
______________________________________________
Mieszanka mikroorganizmów
______________________________________________
Zakres kolorów
______________________________________________
Czerwonka
______________________________________________
MPB (do określenia właściwości proteolitycznych): H2S-; Indol-;
Mannitol: Kwas+; Gaz-;
Maltoza: Kwas+; Gaz-;
Pożywka Peszkowa: wzrost zgodnie z nakłuciem, kolor zmienił się na czerwony, co wskazuje na fermentację mannitolu do kwasu. Wskaźnik – Andrade;
______________________________________________
Escherichia coli
______________________________________________
MPB (do określenia właściwości proteolitycznych): H2S+ (sczerniały); Indol+ (zarumieniony);
Glukoza: Kwas+; Gaz+;
Laktoza: Kwas+; Gaz+;
Maltoza: Kwas+; Gaz+;
Sacharoza: Kwas-; Gaz-;
Pożywka Peszkowa: zmętnienie całej kolumny (kultura jest ruchliwa), kolor zmienił się na czerwony, co wskazuje na fermentację mannitolu do kwasu i obecność pęcherzyków gazu. Wskaźnik – Andrade;
Pożywka Ressela (wskaźnik - błękit bromotymolowy): Skos i kolumna są żółte, a w grubości znajduje się gaz, co wskazuje na rozkład laktozy i fruktozy do gazu i kwasu.
Dur brzuszny
______________________________________________
Średni syk (wskaźnik - rozol wodny):
Glukoza: Kwas+; Gaz-;
Maltoza: Kwas+; Gaz-;
Mannitol: Kwas+; Gaz-;
Laktoza: Kwas-; Gaz-;
Sacharoza: Kwas-; Gaz-;
Pożywka Peszkowa: zmętnienie całej kolumny (kultura jest ruchliwa), kolor zmienił się na czerwony, co wskazuje na fermentację mannitolu do kwasu. Nie ma gazu. Wskaźnik – Andrade;
______________________________________________
Salmonelloza
______________________________________________
MPB (do określenia właściwości proteolitycznych): H2S+ (sczerniały); Indol-;
Średni syk (wskaźnik - rozol wodny):
Maltoza: Kwas+; Gaz-;
Sacharoza: Kwas-; Gaz-;
Pożywka Peszkowa: zmętnienie całej kolumny (kultura jest ruchliwa), kolor zmienił się na czerwony, co wskazuje na fermentację mannitolu do kwasu i gazu. Wskaźnik – Andrade;
Pożywka Ressela (wskaźnik - błękit bromotymolowy): Nachylenie ma niezmieniony kolor, a kolumna jest żółta. W grubości występuje gaz, co wskazuje na rozkład fruktozy na gaz i kwas, laktoza jest niesfermentowana;
______________________________________________
Gangrena gazowa
______________________________________________
Podłoże Kitta-Tarozzi: płynne podłoże do hodowli beztlenowców. Aby go przygotować, wątrobę (mięso) pokrojoną na małe kawałki zalewa się trzykrotną ilością MPB, gotuje przez 30 minut i filtruje. Wysuszone kawałki wątroby umieszcza się (w celu adsorpcji tlenu) w probówkach i napełnia bulionem. Sterylizować w temperaturze 120°C przez 30 minut. Przed użyciem należy rozgrzać i napełnić sterylnym neutralnym olejem parafinowym.
Na tym podłożu wykryto wzrost w postaci zmętnienia. Występuje również powstawanie gazów.
______________________________________________
Botulizm
______________________________________________
Pożywka Weinberga: półpłynna pożywka stosowana do hodowli patogennych beztlenowców, będąca bulionem mięsno-peptonowym zawierającym 1% agaru i 0,2% glukozy;
W kolumnie z agarem cukrowym znaleziono małe, puszyste kolonie w kształcie krążka. Pożywka pęka z powodu zwiększonego wytwarzania gazu podczas fermentacji glukozy.
Robią cięcie. Używając pipety lub igły Pasteura, pobrać część kolonii i umieścić je w pożywce Kitta-Tarozzi w celu akumulacji.
______________________________________________
Reakcja aglutynacji (rozszerzona)
______________________________________________
Uwaga!: Kochani, nie zapominajcie, że reakcje trzeba czytać od końca – sprawdzając kontrolę surowicy i antygenu. Następnie najprawdopodobniej zostaniesz poproszony o definicję miano surowicy aglutynującej (maksymalne rozcieńczenie surowicy, przy którym następuje aglutynacja z odpowiednim mikroorganizmem) I diagnostyczne miano surowicy (miano przeciwciał przeciwko konkretnemu patogenowi w surowicy krwi, wykrywane u pacjentów i nieobserwowane u osób zdrowych).
Przykładowa odpowiedź: Ta reakcja jest szczegółową reakcją aglutynacji. Kontrola surowicy ma postać klarownego płynu i jest ujemna. Kontrola antygenowa wykazuje zmętnienie, także ujemne. Patrzymy na rozcieńczenie 1/100 - przezroczyste z parasolką na dole, po wstrząśnięciu - płatki, co oznacza, że reakcja jest pozytywna. I tak dalej aż do 1/6400. Patrzymy na rozcieńczenie 1/12800, zauważalne jest zmętnienie - reakcja jest ujemna.
W rezultacie reakcja aglutynacji jest dodatnia aż do rozcieńczenia 1/6400, przy kontrolach ujemnych, co oznacza, że miano surowicy testowej wynosi 1/6400.
Reakcja aglutynacji to sklejanie ciałek (bakterii, czerwonych krwinek itp.) przez przeciwciała w obecności elektrolitów – chlorku sodu.
______________________________________________
Reakcja wiązania komplementu
______________________________________________
RSC opiera się na aktywacji dopełniacza przez kompleks antygen-przeciwciało.
Odbywa się w dwóch etapach:
Inkubacja mieszaniny: antygen+przeciwciało+dopełniacz
Wskaźnik: wykrycie jednego dopełniacza poprzez dodanie układu hemolitycznego (erytrocyty owiec + surowica hemolityczna w potrójnym mianie)
Przykładowa odpowiedź: CSC rejestrowano z surowicami pacjentów 1 i 2 w celu zidentyfikowania w nich przeciwciał przeciwko odpowiedniemu antygenowi. Reakcja z surowicą pacjenta 2 jest ujemna, gdyż w pierwszym etapie przeciwciało i antygen nie pasowały do siebie i nie wiązały się, czyli nie wiązały dopełniacza. Następnie wolny dopełniacz łączy się z układem hemolitycznym i następuje liza. W surowicy pacjenta 1 wykryto opóźnioną hemolizę, co oznacza, że utworzył się kompleks „przeciwciało+antygen+dopełniacz”. Dopełniacz jest związany i nie przyłącza się do układu hemolitycznego. Nie ma hemolizy. Diagnoza jest pozytywna.
______________________________________________
Bierna (pośrednia) reakcja hemaglutynacji
______________________________________________
W RNGA przeciwciała w surowicy krwi wykrywa się za pomocą antygenowego narzędzia diagnostycznego dla erytrocytów, czyli erytrocytów z zaadsorbowanymi na nich antygenami.
RPHA umieszcza się w plastikowych tabletkach lub w probówkach z rozcieńczonymi surowicami krwi pacjenta, do których dodaje się diagnostykę erytrocytów.
Czerwone krwinki (lub cząsteczki lateksu) wraz z zaadsorbowanymi na nich antygenami oddziałują z odpowiednimi przeciwciałami w surowicy krwi, co powoduje, że czerwone krwinki sklejają się i opadają na dno probówki lub komórki w postaci zapiekanki osad. W reakcji negatywnej czerwone krwinki osiadają w postaci guzika.
Cena: 2970,00 RUB
Możesz dodać artykuł do koszyka podając jego ilość
Producent: Oboleńsk
Kraj: Rosja
Jednostka jednostka: kg
Rodzaj opakowania: słoik polietylenowy
Artykuł: O9
Opis
Pożywka Levin-GRM z eozyną i błękitem metylenowym do izolacji patogennych i warunkowo patogennych enterobakterii z materiału badawczego, ich różnicowanie na podstawie fermentacji laktozy. Na pożywce można także izolować gronkowce koagulazo-dodatnie. Eozyna i błękit metylenowy zapewniają selektywne właściwości. W postaci suchego proszku opakowanie 250 g wystarczy na przygotowanie 6,6 litra podłoża agarowego stałego
Cel funkcjonalny
Różnicowe podłoże diagnostyczne selektywne, zasada działania opiera się na zdolności niektórych bakterii do fermentacji laktozy z utworzeniem produktów przesuwających pH na stronę kwaśną, a w efekcie zmianę barwy zespołu wskaźników, które zabarwić kolonie bakterii kwasotwórczych na ciemnofioletowy kolor. W wyniku hodowli uzyskuje się wyraźne zróżnicowanie w postaci izolowanych pojedynczych kolonii: kolonie ujemne pod względem laktozy tworzą przezroczyste lub przeświecające, bezbarwne kolonie z możliwym lekkim zabarwieniem, np. Staphylococcus aureus, Shigella flexneri. Enterobacteriaceae zawierające laktozę wytwarzają nieprzezroczyste kolory od jasnoliliowego do fioletowego z lub bez zielonkawego metalicznego połysku, szczególnie u E. coli
Dane techniczneSkład podłoża: hydrolizat trzustkowy mączki rybnej, ekstrakt drożdżowy, laktoza, fosforan disodowy, chlorek sodu, eozyna-H, błękit metylenowy, agar.
W postaci jednorodnego, suchego, łatwo rozpuszczalnego proszku o jasnoliliowym kolorze.
Przygotowane podłoże jest przezroczyste, od jasnoliliowego do czerwonobrązowego.
Kwasowość podłoża: w temperaturze 25°C pH wynosi 7,2 ± 0,2.
Przygotowane podłoże można stosować przez pierwsze trzy dni w temperaturze przechowywania +2...8°C w zaciemnionym miejscu.
Forma uwalniania: suchy proszek w słoikach polietylenowych po 250 g.
Warunki przechowywania: w hermetycznie zamkniętym opakowaniu, w suchym miejscu, chronionym przed światłem, w temperaturze +2...30°C.
Okres przydatności do spożycia - 2 lata od daty produkcji podanej na opakowaniu.
Dowód rejestracyjny nr FSR 2008/03063
Pepton enzymatyczny, suchy - 10,0 g.
Autolizowany ekstrakt drożdżowy klarowany - 1,5 g.
Laktoza - 10,0 g.
Fosforan sodu dwupodstawiony - 2,0 g.
Agar mikrobiologiczny - 13,0 g.
Chlorek sodu - 3,0 g.
Eozyna sodowa, wskaźnik - 0,4 g.
Błękit metylenowy, wskaźnik - 0,075 g. Pożywka stała do izolacji i różnicowania enterobakterii z materiału testowego na podstawie fermentacji laktozy.
Suche podłoże wymieszać w ilości 40 g na 1 litr oczyszczonej wody, doprowadzić do wrzenia i gotować do całkowitego rozpuszczenia agaru (2-3 minuty), przesączyć przez filtr z gazy bawełnianej, przelać do sterylnych butelek i wysterylizować przez autoklawowanie w temperaturze 112°C przez 20 min. Ochłodzić sterylne podłoże do temperatury 45-48oC i rozlać do sterylnych szalek Petriego; Po stwardnieniu agaru płytki suszyć w temperaturze 37°C przez 40-60 minut. Kolor gotowego podłoża powinien być czerwonawo-ceglasty.
Przygotowane podłoże przed użyciem można przechowywać w ciemnym miejscu nie dłużej niż 7 dni w temperaturze 2-8°C.
Inkubować inokulacje próbek testowych przez 18-48 godzin w temperaturze 37°C. Wizualna kontrola wzrostu opiera się na obecności lub braku i wyglądzie kolonii. Mikroorganizmy zawierające laktozę tworzą nieprzezroczyste kolonie w kolorze od jasnoliliowego do fioletowego z metalicznym połyskiem lub bez. Mikroorganizmy nie zawierające laktozy tworzą przezroczyste lub półprzezroczyste, bezbarwne kolonie (mogą tworzyć kolonie bladoróżowe).
Utylizacja podłoży suchych, których termin przydatności do spożycia upłynął oraz zużytych, gotowych podłoży hodowlanych – zgodnie z wymaganiami SanPiN 2.1.7.728-99 Zasady zbierania, przechowywania i unieszkodliwiania odpadów pochodzących z placówek medycznych.
Przechowywanie - w opakowaniu producenta, w suchym miejscu, chronić przed światłem w temperaturze od 2°C do 25°C. Zamrażanie jest niedozwolone.Transport - w temperaturach od 2°C do 25°C. Zamrażanie jest niedozwolone.
— pożywka do izolacji, zliczania i różnicowania mikroorganizmów Gram-ujemnych z rodziny Enterobacteriaceae.
MieszaninaŚrodowisko obejmuje:
- pepton
- Fosforan potasu
- laktoza
- Eosin Y
- Błękit metylenowy
- Agar-agar
Pożywka ma pH około 7 i jest trzymana w ciemności. Przygotowane podłoże ma barwę czerwonawo-liliową, nie opalizujące z zielonkawym odcieniem i lekkim osadem, jeśli na szalkach Petriego utworzy się żel.
Cel i zasada działaniaPodłoże to zostało opracowane przez amerykańskiego mikrobiologa Levine'a i służy do różnicowania Escherichia coli I Enterobacter aerogenes, a także do szybkiej identyfikacji grzybów Candida albicans. Amerykańscy mikrobiolodzy polecają to podłoże do izolacji, zliczania i separacji drobnoustrojów Gram-ujemnych z grupy jelit (coli). Błękit metylenowy i eozyna w pewnym stopniu hamują rozwój mikroorganizmów Gram-dodatnich. Barwniki te służą jako wskaźniki rozkładu laktozy. Drożdże i niektóre bakterie Gram-dodatnie, takie jak enterokoki, mogą rosnąć na tym podłożu w postaci punktowych kolonii.
Mikrobiolog Weld zaproponował zastosowanie agaru Lewina z dodatkiem chlorowodorku tetracykliny do szybkiej identyfikacji grzybów Candida albicans w materiale klinicznym. Wykrycie tych grzybów w materiale takim jak kał, wydzielina z jamy ustnej i pochwy, paznokcie, płatki skóry i inne możliwe jest po 24-48 godzinach przy inkubacji w temperaturze 35-37°C w atmosferze zawierającej 10% dwutlenku węgla. Jednakże właściwości kulturowe grzybów są różne.
Właściwości kulturoweCharakterystyka wzrostu szczepów referencyjnych po 24-48 godzinach w temperaturze 35-37°C.
Wzrost szczepów mikroorganizmów (ATSS).
Escherichia coli(25922) Obfite
Pseudomonas aeruginosa(27853) Obfite
Salmonella typhimurium(14028) Obfite
Candida albicans(10231) Dobry lub obfity (w atmosferze zawierającej 10% dwutlenku węgla)
Enterobacter aerogenes(13048) Dobrze
Staphylococcus aureus(25923) Słabe lub nieobecne
Saccharomyces cerevisiae(9763) Słabe lub nieobecne
Enterococcus faecalis(29212) Wyciszone
Levina-GRM Obolensk Pożywka z eozyną i błękitem metylenowym do izolacji i różnicowania enterobakterii chorobotwórczych i warunkowo patogennych, a także do izolacji gronkowców, sucha.
Cena za opakowanie 0,25 kg
INSTRUKCJA stosowania pożywki z eozyną i błękitem metylenowym suchym - Levin Medium-GRM Obolensk
Podłoże Levin-GRM Obolensk przeznaczone jest do badań bakteriologicznych w mikrobiologii sanitarnej i klinicznej w celu izolacji i różnicowania enterobakterii chorobotwórczych i warunkowo patogennych, a także izolacji gronkowców.
Podłoże Levin-GRM Obolensk to drobny, higroskopijny, światłoczuły proszek o jasnoliliowej barwie.
Dostępny w puszkach polietylenowych o masie 250 g.
2.1. ZASADA DZIAŁANIA
Obecność eozyny i błękitu metylenowego w podłożu nadaje mu właściwości selektywne.
Zdolność różnicowania pożywki opiera się na zmianach pH pożywki pod wpływem kwasu powstającego podczas fermentacji laktozy przez bakterie. Zespół wskaźników w strefie kwasowej zabarwia kolonie bakterii kwasotwórczych na kolor ciemnofioletowy; niektóre kolonie mają zielonkawy, metaliczny połysk.
2.2. MIESZANINA
Pożywka Levin-GRM Obolensk jest mieszaniną suchych składników w ilości g/l:
Pożywka Levin-GRM powinna zapewniać wzrost testowych szczepów Shigella flexneri 1a 8516 i Escherichia coli 168/59 (O111:K58) na wszystkich posianych płytkach Petriego po 18-20 godzinach inkubacji w temperaturze (37±1)°C po zaszczepieniu 0,1 ml zawiesiny hodowli drobnoustrojów każdego szczepu testowego z rozcieńczenia 10 -7 oraz wzrost szczepu testowego Staphylococcus aureus 209-P (ATCC 6538-P) po 48 godzinach inkubacji w temperaturze (37±1)°C po zaszczepieniu 0,1 ml zawiesiny drobnoustrojów kultury szczepu testowego z rozcieńczenia 10 -5.
Różnicowanie właściwości środowiska. Pożywka musi zapewniać wyraźne odróżnienie Shigella od Escherichia na wszystkich zaszczepionych płytkach podczas wysiewu 0,1 ml mieszaniny drobnoustrojów S. flexneri 1a 8516 i E. coli 168/59 (O111:K58) z rozcieńczenia 10 -6 (w w stosunku 1:1) po 18-20 godzinach inkubacji w temperaturze (37±1)°C.
Potencjalne ryzyko stosowania pożywki zgodnie z Rozporządzeniem
Ministerstwo Zdrowia Federacji Rosyjskiej nr 4n z dnia 6 czerwca 2012 r. - klasa 2 a.
- Termostat zapewniający temperaturę 37±1°C
- Wagi laboratoryjne 2 klasy dokładności
- Autoklaw
- Szklane probówki
- Pipety szklane umożliwiające pobieranie cieczy o objętości 1 i 2 ml
- Szklany cylinder miarowy o pojemności 1000 ml
- Szalki Petriego sterylne
- Woda destylowana
- Kolby
- Lejki szklane
Przedmioty badań w klinicznej diagnostyce laboratoryjnej (krew, żółć, mocz, ropa itp.).
Badanie przeprowadzane jest w laboratorium bakteriologicznym przez lekarzy specjalistów.
7.1. Przygotowanie podłoża Levin-GRM Obolensk.
Proszek w ilości wskazanej na etykiecie do przygotowania określonej serii pożywki miesza się w 1 litrze wody destylowanej, gotuje przez 3 minuty, przesącza przez filtr z gazy bawełnianej i sterylizuje poprzez autoklawowanie w temperaturze 110°C przez 20 minut. Sterylne środowisko schładza się do określonej temperatury
45-50°C, rozlać na sterylne szalki Petriego warstwą o grubości 5-6 mm. Po zestaleniu podłoża, kubki suszy się w temperaturze (37±1)°C przez 40-60 minut. Przygotowane podłoże na szalkach Petriego jest przezroczyste, od jasnoliliowego do czerwonobrązowego.
Sterylne podłoże można stosować przez 3 dni, jeśli będzie przechowywane w temperaturze 2-8 C.
7.2. Pobieranie, zaszczepianie zakażonego materiału i rejestrowanie wyników odbywa się zgodnie z „Wytycznymi diagnostyki mikrobiologicznej chorób wywoływanych przez enterobakterie” (M., 1984) oraz zarządzeniem Ministra Zdrowia ZSRR z dnia 22 kwietnia 1985 r., nr 535 „W sprawie ujednolicenia metod badań mikrobiologicznych (bakteriologicznych) stosowanych w klinicznych laboratoriach diagnostycznych instytucji medycznych”.
7.3. Materiał do badań ostrożnie wciera się na całej powierzchni podłoża sterylną szpatułką. Inkubować w temperaturze (37±1)°C przez 46–48 godzin.
Po 18-20 godzinach inkubacji w temperaturze (37±1)°C można zaobserwować wzór wzrostu kultur S. flexneri 1a 8516 i E.coli 168/59 (O111:K58), a po 46-48 godzinach uwzględniono wizualnie wzór wzrostu kultury S. aureus 209 -P (ATCC 6538-P).
Kolonie S.flexneri 1a 8516 powinny być okrągłe, przezroczyste, bezbarwne lub lekko różowe, o średnicy 1,0-1,5 mm.
Kolonie E. coli 168/59 (O111:K58) powinny być okrągłe, koloru ciemnofioletowego z zielonym metalicznym połyskiem (mogą występować pojedyncze kolonie bez metalicznego połysku), o średnicy 1,5-2,0 mm.
Kolonie S. aureus 209-P (ATCC 6538-P) powinny być okrągłe, bezbarwne lub jasnofioletowe z ciemnym środkiem, o średnicy do 1,0 mm.
Utylizacja serii pożywek Levina-GRM Obolensk, których termin ważności upłynął, odbywa się zgodnie z
SanPiN 2.1.7.2790-10 jako odpad medyczny należący do klasy „A” – odpad epidemiologicznie bezpieczny.
Niszczenie środowiska Levin-GRM po kontroli biologicznej przeprowadza się zgodnie z SanPiN 2.1.7.2790-10 jako odpad medyczny klasy „B” z obowiązkową wstępną neutralizacją poprzez autoklawowanie przez 2 godziny w temperaturze (133±1) ˚ C.
Postępowanie z odpadami medycznymi powinno odbywać się zgodnie ze schematem przyjętym w konkretnej organizacji prowadzącej działalność medyczną i (lub) farmaceutyczną. Schemat ten został opracowany zgodnie z wymogami powyższych przepisów sanitarnych i zatwierdzony przez kierownika organizacji.
